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支原體污染的特點(diǎn)及檢驗

      支原體是一種大小介于細菌和病毒之間(最小直徑0.2um)并獨立生活的微生物。約有1%可通過(guò)濾菌器。支原體無(wú)細胞壁形態(tài)呈高度多形性??蔀閳A形、絲狀或梨形。


      支原體形態(tài)多變,在光境下不易看清內部結構。電鏡下觀(guān)察支原體膜為三層結構。其中央有電干密度大的密集顆粒群或絲狀的中心束。支原體多吸附或散在于細胞表面和細胞之間。橫斷面與細胞微絨毛相似,但微絨毛電子密度比支原體小,且中央無(wú)顆粒群或中央束。


      支原體代謝需固醇類(lèi)物質(zhì)、部分種類(lèi)需要精氨酸、O 2或葡萄糖,每一種支原體都有自身持點(diǎn)。多數支原體適合于偏堿條件下生存(PH7.6—8.0),對酸耐受性差。對熱比較敏感,對一般抗生素不敏感。


      支原體污染細胞后。培養液可不發(fā)生混濁。多數情況下細胞病理變化輕微或不顯著(zhù),細微變化也可由于傳代、換液而緩解。因此易被忽視。但個(gè)別嚴重者,可致細胞增殖緩慢。甚至從培養器皿脫落。


為確定有無(wú)支原體污染可做如下檢酗:


      ①相差顯微境檢測:將細胞按種于事先放置于培養瓶?jì)鹊纳w玻片上,24h后取出,用相差油鏡觀(guān)察。支原體呈暗色微小顆粒位于細胞表面和細胞之間。


      ②熒光染色法:熒光染色用能與DNA特異性結合的熒光染料Hoechst 33258,可使支原體內含有的DNA著(zhù)色,染色后用熒光顯微鏡觀(guān)察。具體方法如下:首先將細胞接種蓋玻片上,在細胞未長(cháng)滿(mǎn)前取出玻片,用不合酚紅的Hanks液漂洗一下,用l: 3醋酸甲酵固定10Min,然后用生理鹽水漂洗。置于用生理鹽水配濃度為50pg/ml的Hoechst 33258中染色10min。染色后用蒸溜水洗1—2min。向細胞面滴加pH5.5磷酸緩沖液數滴,然后置熒光顯微鏡下觀(guān)察。鏡下支原體為散在于細胞同圍或附于細胞膜表面的亮綠色小點(diǎn)。


      ③電鏡檢查;用掃描電鏡方法簡(jiǎn)便快速。也可以利用透射電鏡。


      ④DNA分子條文檢查或支原體培養等方法:檢出率高。但方法較為復雜


      支原體是一類(lèi)缺乏細胞壁的原核細胞型微生物,大小一般在0.3-0.5um之間,呈高度多形性,有球形、桿形、絲狀、分枝狀等多種形態(tài)。它不同于細胞,也不同于病毒。支原體用普通染色法不易著(zhù)色,用姬姆薩染色很淺,革蘭染色為陰性。支原體可在雞胚絨毛尿囊膜上或細胞培養中生長(cháng),營(yíng)養要求比細菌高。


      細胞培養(特別是傳代細胞)被支原體污染是個(gè)世界性問(wèn)題。在細胞培養中支原體感染發(fā)生率達到63%,支原體感染發(fā)生后能改變細胞的DNA,RNA及蛋白表達,又不能通過(guò)可視法對其進(jìn)行檢測,而且它對細胞的生長(cháng)率影響較小,不易引起注意。國內外研究表明,95%以上是以下四種支原體:口腔支原體(M.orale)、精氨酸支原體(M.arginini)、豬鼻支原體(M.hyorhinis)和萊氏無(wú)膽甾原體(A.laidlawii),為牛源性。以上是最常見(jiàn)的污染細胞培養的支原體菌群,但能夠污染細胞的支原體種類(lèi)是很多的,國外調查證明,大約有二十多種支原體能污染細胞,有的細胞株可以同時(shí)污染兩種以上的支原體。  


      支原體污染的來(lái)源包括工作環(huán)境的污染、操作者本身的污染(一些支原體在人體是正常菌群)、培養基的污染、污染支原體的細胞造成的交叉污染、實(shí)驗器材帶來(lái)的污染和用來(lái)制備細胞的原始組織或器官的污染。


      組織細胞培養工作中,主要從以下幾個(gè)方面來(lái)預防支原體的污染:控制環(huán)境污染;嚴格實(shí)驗操作;細胞培養基和器材要保證無(wú)菌;在細胞培養基中加入適量的抗生素。支原體污染細胞后,特別是重要的細胞株,有必要清除支原體,常用方法有抗生素處理、抗血清處理、抗生素加抗血清和補體聯(lián)合處理。支原體最突出的結構特征是沒(méi)有細胞壁,一般來(lái)講,對作用于細胞壁生物合成的抗生素,如 -內酰胺類(lèi)、萬(wàn)古霉素等完全不敏感;對多粘菌素(polymycin)、利福平、磺胺藥物普遍耐藥。對支原體最有抑制活性及常用于支原體感染治療的抗生素是四環(huán)素類(lèi)、大環(huán)內酯類(lèi)及一些氟喹諾酮;其他類(lèi)抗生素如氨基糖苷類(lèi)、氯霉素對支原體有較小抑制作用,所以常不用來(lái)作為支原體感染的化學(xué)治療劑。InvivoGen公司研究開(kāi)發(fā)的新一代支原體抗生素M-Plasmocin能有效地殺滅支原體,不影響細胞本身的代謝,并且用M-Plasmocin處理過(guò)的培養細胞,不會(huì )重新感染支原體。


      紅霉素有效,而且不影響細胞生長(cháng)。網(wǎng)友“smilewf”經(jīng)驗是細胞剛開(kāi)始被支原體污染,細胞生長(cháng)極為緩慢,而且狀態(tài)不好,細胞之間及底部總有一些亮晶晶的顆粒狀物質(zhì),換液后好些,但過(guò)2天又會(huì )增多,培養液清亮,嚴重時(shí)象一層細沙鋪在瓶底。剛開(kāi)始以為是消化過(guò)頭引起的細胞的碎片和細胞內的顆粒,后來(lái)發(fā)現與胰酶消化無(wú)關(guān)。使用紅霉素(就在醫院的門(mén)診購買(mǎi),很便宜)后這種現象明顯好轉,背景干凈,細胞生長(cháng)很快,狀態(tài)明顯好轉,但好像紅霉素不能完全根治支原體感染,停藥后一段時(shí)間可以復發(fā),但如果細胞很重要有沒(méi)有多余的細胞時(shí)可以考慮一試,我用后覺(jué)得效果不錯。 


      網(wǎng)友“zllxash”的經(jīng)驗:支原體是細胞培養中最常見(jiàn)的,干擾實(shí)驗結果的一種污染。但由于不易被察覺(jué),有些污染的細胞仍在繼續使用。據查,目前各實(shí)驗室使用的二倍體細胞和傳代細胞中約有11%的細胞受到支原體污染。因此,對支原體污染應嚴加防范。


      用卡那霉素預防支原體污染有效。


檢測方法:


      1、相差顯微鏡檢測;

      2、低張處理地衣紅染色觀(guān)察; 

      3、DNA熒光染色法;

      4、電鏡檢測;

      5、3-H胸腺嘧啶摻入法; 

      6、聚合酶鏈反映法;

      7、免疫學(xué)方法; 

      8 、支原體的培養。


對于支原體污染的細胞,可以采取補救措施:


      1、抗生素排除法:可以用5-10倍于常用量的沖擊法,加入高濃度抗生素后作用24-48小時(shí),再換入常規培養液,有時(shí)可能有效。推薦用量:慶大霉素 200ug/ml ,四環(huán)素10ug/ml ,卡那霉素50ug/ml 。對于支原體污染抗生素應用,預防性應用比污染后使用好。


      2、 加溫除菌:根據支原體耐熱性能差的特點(diǎn)。將受支原體污染的細胞置于41度中作用5-10小時(shí)可以殺滅支原體。但由于41度對培養細胞本身也有較大的影響,故處理前,應先進(jìn)行預試驗,確定出最大限度殺傷支原體而對細胞影響較小的處理時(shí)間。


      支原體菌株來(lái)源:M.Arginini ATCC23838 精氨酸支原體,M.FermentaneATCC19989發(fā)酵支原體 ,M.SalivariumATCC23064唾液支原體 ,M.HominisATCC23114人型支原體 ,M.OraleATCC23714口腔支原體 ,M.HyorhinisATCC29052豬鼻支原體。其共同引物序列來(lái)自16s和23s保守區域,外部引物為F1 5′-ACACCATGGGAGCTGGTAAT-3′,R1 5′-GTTCATCGACTTTCAGACCCAAGGCAT-3′;內部引物為 F2 5′-GTTCTTTGAAAACTGAAT-3′,R2 5′-GCATCCACCAAAAACTCT-3′。 


      PCR反應體系和條件:10×緩沖液(10mMTris-HCl、500mMKCl、20mMMgCl2、0.01%明膠)、PrimerF1、R1、F2、R2的濃度為2nmol/μL、2.5mMd NTPs、Taq酶、H2O、石蠟油覆蓋。反應溫度和時(shí)間為:94℃/2min預變性、94℃/30s變性、55℃/1min退火、72℃/1min延伸,循環(huán)30次后72℃延伸5min。第1次PCR反應取模板10μL,第2次PCR反應以第1次PCR擴增產(chǎn)物為模板取1μL。


一種名為BM-Cyclin的化學(xué)試劑,除體外培養癌細胞中支原體污染具體方法:


      1、選用抗支原體藥物(BM-Cyclin-1、2 ),磷酸緩沖液配制,溶液抽濾除菌,0~4℃保存。


       2、細胞處理過(guò)程:細胞傳代同時(shí)加BM-Cyclin-1 10μg/ml,37℃培養3天;胰蛋白酶消化、傳代,加入BM-Cyclin-2 5μg/ml,37℃培養3天;繼續傳代追加BM-Cyclin-2 5μg/ml一次,培養2~4天(如細胞污染嚴重可重復上述處理過(guò)程)棄藥液,D-Hank’s液洗2次,胰蛋白酶消化傳代,進(jìn)行常規培養。


      3 、在細胞檢測或實(shí)驗前,最好再用常用量的5倍慶大霉素或卡那霉素作短時(shí)間處理,每天30~60分鐘。


      支原體的污染是目前細胞實(shí)驗室比較普遍存在的問(wèn)題,用藥物來(lái)殺滅支原體雖是一種重要措施,畢竟是一種補救方法,而且清除后,支原體仍可重新污染細胞。因此,重要的還在于預防,如嚴格選用無(wú)支原體污染的牛血清,保持細胞培養間潔凈和嚴格無(wú)菌操作等。

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