醋酸纖維薄膜電泳(cellulose acetate membrance electrophoresis)以醋酸纖維薄膜為支持物。它是纖維素的醋酸酯,由纖維素的羥基經(jīng)乙?;瞥?。它溶于丙酮等有機溶液中,即可涂布成均一細密的微孔薄膜,厚度以0.1 mm~0.15 mm 為宜。太厚吸水性差,分離效果不好;太薄則膜片缺少應有的機械強度則易碎。
應用
醋酸纖維薄膜電泳操作簡(jiǎn)單、快速、廉價(jià)。已經(jīng)廣泛用于血清蛋白,血紅蛋白,球蛋白,脂蛋白,糖蛋 白,甲胎蛋白,類(lèi)固醇激素及同工酶等的分離分析中,盡管它的分辨力比聚丙酰胺凝膠電泳低,但它具有簡(jiǎn)單,快速等優(yōu)點(diǎn)。
特點(diǎn)
1. 醋酸纖維薄膜對蛋白質(zhì)樣品吸附極少,無(wú)“拖尾”現象,染色后背景能完全脫色,各種蛋白質(zhì)染色帶分離清晰,因而提高了測定的精確性。
2. 快速省時(shí)。由于醋酸纖維薄膜親水性較濾紙小,薄膜中所容納的緩沖液也較少,電滲作用小,電泳時(shí)大部分電流是由樣品傳導的,所以分離速度快,電泳時(shí)間短,一般電泳45~60 min 即可,加上染色,脫色,整個(gè)電泳完成僅需90 min 左右。
3. 靈敏度高,樣品用量少。 血清蛋白僅需2μl血清,甚至加樣體積少至0.1 μl,僅含5 μg 蛋白樣品也可得到清晰的分離帶。臨床醫學(xué)檢驗利用這一點(diǎn),檢測在病理情況下微量異常蛋白的改變。
4. 應用面廣。某些蛋白在紙上電泳不易分離,如胎兒甲種球蛋白,溶菌酶,胰島素,組蛋白等用醋酸纖維薄膜電泳能較好地分離。
5. 醋酸纖維薄膜電泳染色后,經(jīng)冰乙酸,乙醇混合液或其它溶液浸泡后可制成透明的干板,有利于掃描定量及長(cháng)期保存。
6. 醋酸纖維薄膜電泳與聚丙烯酰胺凝膠電泳相比,操作簡(jiǎn)單,但分離效果不太好。如血清蛋白在醋酸纖維素薄膜電泳中,只能分離出5~6條區帶,而聚丙烯酰胺凝膠電泳可分離出數10條區帶。
注意事項
1. 醋酸纖維薄膜的預處理
市售醋酸纖維薄膜均為干膜片,薄膜的浸潤與選膜是電泳成敗的重要關(guān)鍵之一。將干膜片漂浮于電極緩沖液表面,其目的是選擇膜片厚薄及均勻度,如漂浮15 s~30 s 時(shí),膜片吸水不均勻,則有白斑點(diǎn)或條紋,這提示膜片厚薄不勻,應舍去不用,以免造成電泳后區帶扭曲,界線(xiàn)不清,背景脫色困難,結果難以重復。由于醋酸纖維薄膜親水性比紙小,浸泡30 min 以上是保證膜片上有一定量的緩沖液,并使其恢復到原來(lái)多孔的網(wǎng)狀結構。最好是讓漂浮于緩沖液的薄膜吸滿(mǎn)緩沖液后自然下沉,這樣可將膜片上聚集的小氣泡趕著(zhù)走。點(diǎn)樣時(shí),應將膜片表面多余的緩沖液用濾紙吸去,以免緩沖液太多引起樣品擴散。但也不能吸得太干,太干則樣品不易進(jìn)入薄膜的網(wǎng)孔內,而造成電泳起始點(diǎn)參差不齊,影響分離效果。吸水量以不干不濕為宜。為防止指紋感染,取膜時(shí),應戴指套或用鑷子。
2. 緩沖液的選擇
醋酸纖維薄膜電泳常選用pH8.6巴比妥溶液,其濃度為0.05 mol/L~0.09 mol/L。選擇何種濃度與樣品及薄膜的薄厚有關(guān)。選擇時(shí),先初步定下某一濃度,如電泳槽兩極之間的膜長(cháng)度為8 cm~10 cm,則需電壓25 V/cm膜長(cháng),電流強度為0.4 mA/cm~0.5 mA/cm膜寬。當電泳達不到或超過(guò)這個(gè)值時(shí),則應增加緩沖液濃度或進(jìn)行稀釋。緩沖液濃度過(guò)低,則區帶泳動(dòng)速度快,并由于擴散變寬;緩沖液濃度過(guò)高,則區帶泳動(dòng)速度慢,區帶分布過(guò)于集中不易分辨。
3. 加樣量
加樣品的多少與電泳條件、樣品的性質(zhì)、染色方法與檢測手段靈敏度密切相關(guān)。作為一般原則,檢測方法越靈敏,加樣量則越少,對分離更有利。如加樣量過(guò)大,則電泳后區帶分離不清楚,甚至互相干擾,染色也較費時(shí)。如電泳后用洗脫法定量時(shí),每厘米加樣線(xiàn)上需加樣品0.1 μl~0.5 μl約相當于5 μg~1000 μg蛋白。血清蛋白常規電泳分離時(shí),每厘米加樣線(xiàn)加樣量不超過(guò)1 μl,相當于60μg~80μg的蛋白質(zhì)。但糖蛋白和脂蛋白電泳時(shí),加樣量則應多些。對每種樣品加樣量均應先作預實(shí)驗加以選擇。點(diǎn)樣好壞是獲得理想圖譜的重要環(huán)節之一,以印章法加樣時(shí),動(dòng)作應輕、穩,用力不能太重,以免將薄膜弄壞或印出凹陷而影響電泳區帶分離效果。
4. 電量的選擇
電泳過(guò)程應選擇合適的電流強度,一般電流強度為0.4 mA/cm~0.5 mA/cm寬膜為宜。電流強度高,尤其在溫度較高的環(huán)境中,可引起蛋白質(zhì)變性或由于熱效應引起緩沖液中水分蒸發(fā),使緩沖液濃度增加,造成膜片干涸。電流過(guò)低,則樣品泳動(dòng)速度慢且易擴散。
5. 染色液的選擇
對醋酸纖維薄膜電泳后染色應根據樣品的特點(diǎn)加以選擇。其原則是染料對被分離樣品有較強的著(zhù)色力,背景易脫色;應盡量采用水溶性染料,不宜選擇醇溶性染料,以免引起醋酸纖維素膜溶解。應控制染色時(shí)間。時(shí)間長(cháng),薄膜底色深不易脫去;時(shí)間短,著(zhù)色淺不宜區分,或造成條帶染色不均,必要時(shí)可進(jìn)行復染。
6. 透明及保存
透明液應臨用前配制,以免冰乙酸及乙醇揮發(fā)影響透明效果。這些試劑最好選用分析純。透明前,薄膜應完全干燥。透明時(shí)間應掌握好,如在透明乙液中浸泡時(shí)間太長(cháng)則薄膜溶解,太短則透明度不佳。透明后的薄膜完全干燥后才浸入石蠟中,使薄膜軟化。如有水,則液體石蠟不易浸入,薄膜不易平展。