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原核表達實(shí)驗方法

 一、原理

 

      1、E .coli 表達系統 


      E .coli 是重要的原核表達體系。在重組基因轉化入E .coli 菌株以后,通過(guò)溫度的控制,誘導其在宿主菌內表達目的蛋白質(zhì),將表達樣品進(jìn)行SDS-PAGE 以檢測表達蛋白質(zhì)。


      2、外源基因的誘導表達 


      提高外源基因表達水平的基本手段之一,就是將宿主菌的生長(cháng)與外源基因的表達分成兩個(gè)階段,以減輕宿主菌的負荷。常用的有溫度誘導和藥物誘導。本實(shí)驗采用異丙基硫代-β-D-半乳糖昔(IPTG)誘導外源基因表達。


      不同的表達質(zhì)粒表達方法并不完全相同,因啟動(dòng)子不同,誘導表達要根據具體情況而定。 


二、材料 


      1、誘導表達材料 


      (1 )LB (Luria—Bertani))培養基 


      酵母膏 (Yeast extract)5g 蛋白胨 (Peptone)10g 


      NaCl10g 瓊脂 (Agar)1-2% 


      蒸餾水 (Distilled water)1000ml pH 7.0 


      適用范圍:大腸桿菌 


      (2 )IPTG 貯備液:2 g IPTG溶于10 ml 蒸餾水中,0 .22 μm 濾膜過(guò)濾除菌,分裝成1 ml /份,-20 ℃ 保存。 


      (3 )l× 凝膠電泳加樣緩沖液: 


      50 mmol / L Tris -CI (pH 6 .8 ) 


      50 mmol / L DTT 


      2 % SDS (電泳級) 


      0.1 % 溴酚藍 


      10 % 甘油 


      2、大腸桿菌包涵體的分離與蛋白純化材料 


      酶溶法 


    (1)裂解緩沖液:

 
      50 mmol / L Tris-CI (pH 8 .0 ) 


      1 mmol / L EDTA 


      100 mmol / LNaCI 


    (2)50 mmol / L

 

    (3)10 mg / ml 溶菌酶。 


    (4)脫氧膽酸。 


    (5)1 mg / ml DNase I。 

 
      超聲破碎法 

 
      (1 )TE 緩沖液。

 
      (2 )2×SDS -PAGE 凝膠電泳加樣緩沖液:

 
      100 mmol / L Tris-HCI (pH 8 .0 ) 


      100 mmol / L DTT 


      4 %SDS 


      0.2 % 溴酚藍 


      20 % 甘油 


三、實(shí)驗方案


      1、外源基因的誘導表達


      (1 )用適當的限制性?xún)惹泻怂崦赶d體DNA 和目的基因。


      (2 )按連接步驟連接目的基因和載體,并轉化到相應的宿主菌。


      (3 )篩選出含重組子的轉化菌落,提取質(zhì)粒DNA 作限制性?xún)惹泻怂崦笀D譜,DNA 序列測定,確定無(wú)誤后進(jìn)行下一步。


      (4 )如果表達載體的原核啟動(dòng)子為PL 啟動(dòng)子,則在30 -32 ℃ 培養數小時(shí),使培養液的OD600達0.4-0.6 ,迅速使溫度升至42 ℃ 繼續培養3 -5h ;如果表達載體的原核啟動(dòng)子為tac 等,則37 ℃培養細菌數小時(shí)達到對數生長(cháng)期后加IPTG 至終濃度為1 mmol / L。繼續培養3 -5h 。


      (5 )取上述培養液1 ml ,1000g 離心,1 min ,沉淀,加100 μL 聚丙烯酰胺凝膠電泳上樣緩沖液后,作SDS -PAGE 檢測。


      2、大腸桿菌包涵體的分離與蛋白質(zhì)純化


      細菌的裂解


      常用方法有:① 高溫珠磨法;② 高壓勻漿;③ 超聲破碎法;④ 酶溶法;⑤ 化學(xué)滲透等。前三種方法屬機械破碎法,并且方法① 、② 已在工業(yè)生產(chǎn)中得到應用,后三種方法在實(shí)驗室研究中應用較為廣泛。下面介紹酶溶法和超聲破碎法的實(shí)驗步驟。


     (1)酶溶法。常用的溶解酶有溶菌酶;β-1,3 -葡聚糖酶;β-1,6 -葡聚糖酶;蛋白酶;殼多糖酶;糖昔酶等。溶菌酶主要對細菌類(lèi)有作用,而其他幾種酶對酵母作用顯著(zhù)。主要步驟為:


      ① 4 ℃ ,5000rpm 離心,15 min ,收集誘導表達的細菌培養液(100 ml )。棄上清,約每克濕菌加3 ml 裂解緩沖液,懸浮沉淀。


      ② 每克菌加8μL PMSF 及80μL 溶菌酶,攪拌20 min ;邊攪拌邊每克菌加4 mg 脫氧膽酸(在冷室中進(jìn)行)。


      超聲破碎法。聲頻為15-20 kHz 的超聲波在高強度聲能輸入下可以進(jìn)行細胞破碎,在處理少量樣品時(shí)操作簡(jiǎn)便,液體量損失較少,同時(shí)還可對染色體DNA 進(jìn)行剪切,大大降低液體的粘稠度。


      ① 收集1 L 誘導表達的工程菌,40 ℃ ,5000r pm 離心,15 min ;棄上清,約每克濕菌加3 mlTE 緩沖液。


      ② 按超聲處理儀廠(chǎng)家提供的功能參數進(jìn)行破菌;10 000g 離心,15min ,分別收集上清液和沉淀。


      ③ 分別取少量上清和沉淀,加入等體積的2× 凝膠電泳加樣緩沖液,進(jìn)行SDS -PAGE 。


      注意事項:超聲破碎與聲頻、聲能、處理時(shí)間、細胞濃度、菌種類(lèi)型等因素有關(guān),應根據具體情況掌握;超聲波破菌前,標本經(jīng)3 -4 次凍溶后更容易破碎。
    

      (本文轉載網(wǎng)絡(luò ))

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