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用CaCl2處理制備新鮮的大腸桿菌感受態(tài)細胞

     1. 37℃的環(huán)境中培養了1620 個(gè)小時(shí)的新鮮平板中挑取一個(gè)單菌落(如大腸桿菌DH52),或1 毫升 新鮮的1620 個(gè)小時(shí)過(guò)夜培養物,轉到一個(gè)含有100毫升 LB培養基的1 L 500 ml 培養瓶中。于37℃振搖培養約23 h(旋轉搖床200~300 r/min),每隔20~30 min測量OD600≈0.4。


     2. 在無(wú)菌條件下將細菌轉移到一個(gè),用冰預冷的50 毫升聚丙烯離心管中,冰上放置10~20分鐘。


     3. 4℃4000/分離心10 分鐘,回收細菌細胞。


     4. 將管倒置1 分鐘,以使最后殘留的痕量培養液流盡。


     5. 10 毫升 用冰預冷的0.1 mM CaCl2重懸每份沉淀,放于冰上 , 4℃4000/分離心10 分鐘,回收細菌細胞。


     6. 50毫升 初始培養物用2毫升冰預冷的0.1 M CaCl2重懸每份沉定,此時(shí),可以迅速將細胞分裝成小份,液氮中冰凍,-70℃貯存備用。


     7. 用無(wú)菌吸頭從感受態(tài)細胞懸液中取200 μl 轉移到無(wú)菌的微量離心管中,加DNA或連接反應混合物(體積≤10 μl,DNA≤50 ng),輕旋以混勻內容物,冰浴30 分鐘。


     8. 將離心管放到預加溫到42℃的水浴中,90 秒。


     9. 將混合物快速轉移到冰浴中,冷卻1~2分鐘,加入適當的培養基在37 ℃培養45 分鐘,使細胞復蘇,并表達質(zhì)粒所攜帶的轉化基因。


     10. 將適當體積(每個(gè)90 mm平板可達200 μl)已轉化的感受態(tài)細胞轉移到相應抗生素的平板培養基上。 


     11. 將平板置于室溫至液體被吸收 ,倒置平板于37℃培養箱中,12~16小時(shí),平板培養,克隆在此期間應該出現,否則轉化不成功。

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