在PCR實(shí)驗中使用適當的聚合酶將確保最佳的產(chǎn)量和特異性，但市場(chǎng)上有那么多種聚合酶，如何選擇，有時(shí)還真是個(gè)難題。廠(chǎng)家一般都會(huì )提供一個(gè)選擇指南，列出每個(gè)產(chǎn)品的特異性、保真度、產(chǎn)量等。保真度是實(shí)驗成功最關(guān)鍵的因素之一，不可不重視。   

     什么是聚合酶保真度？

     DNA聚合酶的保真度是指準確復制目的模板的結果。具體來(lái)說(shuō)，這涉及到多個(gè)步驟，包括讀取模板鏈，選擇正確的三磷酸核苷，并將此核苷酸插入3’引物末端的能力。為了高效區分正確和錯誤的核苷酸，一些DNA聚合酶具有3’到5’核酸外切酶活性。這種“校正”活性可切除不正確摻入的單核苷酸，并將其替換成正確的核苷酸。高保真PCR使用摻入錯誤率低且具有校正活性的DNA聚合酶，以保證目的DNA的忠實(shí)復制。

     保真度在何時(shí)很重要？

     在設計PCR實(shí)驗時(shí)，你首先要考慮你的應用是否需要高保真聚合酶。如果實(shí)驗結果依賴(lài)于正確的DNA序列（如克隆或測序），那么你就要盡量減少錯配核苷酸的摻入。而對于普通PCR或菌落PCR，確定擴增子是否存在或質(zhì)粒上是否帶有插入片段，那高保真則大可不必。由于某些高保真聚合酶的強勁特性，一些研究人員在所有擴增中都使用它們。 

     如何測定保真度？

     廠(chǎng)家通過(guò)各種不同的方法來(lái)確定DNA聚合酶的保真度。Thomas Kunkel曾介紹過(guò)一種方法，使用M13噬菌體的部分lacZα基因，通過(guò)宿主菌落顏色的變化來(lái)檢查DNA合成中的錯誤。以Kunkel的分析為基礎，Wayne Barnes則開(kāi)發(fā)出一種分析，利用PCR來(lái)復制整個(gè)lacZ基因和兩個(gè)抗藥性基因的一部分，隨后連接、克隆、轉化和藍白斑篩選。若lacZ基因存在錯誤，則破壞β-半乳糖苷酶活性，導致白斑的出現。通過(guò)這些實(shí)驗方法，白斑克隆的比例可轉化為錯誤摻入的數量。Sanger測序則提供了保真度的更直接讀取，可檢測所有突變。利用這種方法可確定聚合酶的整個(gè)突變譜。

     何為高保真？ 

     關(guān)于DNA聚合酶的高保真，目前還沒(méi)有統一的定義。人們往往與Taq DNA聚合酶比較，來(lái)判斷保真度的相對高低。例如，NEB（New England Biolabs）的科學(xué)家測定Taq聚合酶的錯誤率為2.7x10-4 ± 0.8x10-4，或每3700個(gè)堿基1個(gè)錯誤。這些數據表明，利用Taq以25個(gè)PCR循環(huán)擴增400 bp的片段，可能一半的克隆都帶有錯誤。對于較大的片段如1 kb，每個(gè)克隆都可能帶有不想要的突變。相比之下，NEB的Q5超保真聚合酶的錯誤率比Taq低100倍。根據這一數據，200個(gè)克隆中的199個(gè)將是正確的。

     通過(guò)以上介紹，相信你對保真度這個(gè)概念有了一定的了解。下次在購買(mǎi)高保真酶之前，除了看看宣傳單頁(yè)上的介紹，還可以了解一下他們是如何測定的，這樣就不會(huì )被各種數字所蒙蔽了。